Suscribite

aula virtual

icono-aula
¿Olvidaste tu contraseña?

Cursos de Posgrado en la Facultad de Farmacia y Bioquímica (UBA)

12/10/12

Difundimos información sobre los cursos de posgrado que se dictarán a partir de Noviembre de de 2012 en la Facultad de Farmacia y Bioquímica de la Universidad de Buenos Aires.

Cursos de Posgrado en la Facultad de Farmacia y Bioquímica (UBA)

Cursos de la escuela de posgrado

 

Más información en www.ffyb.uba.ar, posgrado

 

Control de calidad de especias o condimentos vegetales

Directores: Prof. Dr. Marcelo Wagner, Dr. Rafael Ricco

Colaboradores: Dra. Graciela Bassols, Dra. Beatriz Varela, Dra. Ana Rugna, Farm. y Bioq. Roxana Roldán, Farm. Roxana Albrecht, Bioq. y Farm. Alejandro Vugin, Farm. Adolfo Márquez, Farm. Ignacio Agudelo. 

 

Lugar donde se realiza: Cátedra de Farmacobotánica, Junín 956, cuarto piso, CABA.

Período de desarrollo: 5 al 9 de noviembre de 2012, lunes a viernes de 18.00 a 21.00. Carga horaria: 15 h.

Requisitos de admisión: farmacéutico, bioquímico, licenciado en Alimentos, profesionales y técnicos de la industria de alimentos.

Arancel: $ 505 (incluye certificado). Diploma (optativo) $20.

 

Propósito. Aplicación de técnicas micrográficas, espectroscópicas y de cromatografía para establecer la autenticidad, contaminación o la adulteración de especias.

Clases teóricas. Características generales de las especias o condimentos vegetales. Concepto de autenticidad, contaminación o la adulteración de especias.

Trabajos prácticos. Análisis micrográfico y cromatografía comparativa de muestras genuinas, adulteradas y del comercio.

Evaluación: con evaluación final.

 

Curso teórico - práctico sobre análisis filogenético de genomas virales

Directores: Prof. Dr. Rodolfo Campos, Prof. Dra. Viviana Mbayed

Colaboradores: Dra. Carolina Torres,Dr. Andrés Culasso.

 

Lugar donde se realiza: Cátedra de Virología, Junín 956, cuarto piso, CABA.

Período de desarrollo: 19 al 23 de noviembre de 2012, lunes a viernes de 09.00 a 12.00

Requisitos de admisión: bioquímico, licenciado en Ciencias Biológicas y afines. Enviar CV resumido (2 páginas) y carta detallando las futuras aplicaciones que se darán a los conocimientos adquiridos en el curso (vmbayed@ffyb.uba.ar), indicando en asunto: CURSO FILOGENIA 2012

Arancel: $305 (incluye certificado). Diploma (optativo) $20.

 

Propósito. Brindar conocimientos teóricos y manejo de herramientas prácticas para el análisis filogenético y de coalescencia de secuencias genómicas, en especial aquellas de origen viral. Acercamiento y discusión de las aplicaciones prácticas de estas herramientas.

Clases teóricas. Introducción a la filogenia: alineamiento de secuencias, métodos de inferencia filogenética, evaluación de la confiabilidad de los árboles. Análisis de coalescencia. Relojes moleculares: estricto y relajado. Modelos demográficos. Metodología para el estudio de datos heterocronos/homocronos. Introducción al análisis filogeográfico. Estadísticos de asociación de la filogenia a caracteres multiestados.

Trabajos prácticos. A partir de matrices de datos (secuencias genómicas virales) se plantearán ejercicioes para la utilización de distintas herramientas bioinformáticas de distribución libre. Se abordarán los programas más utilizados para la realización de alineamientos de secuencias (ClustalX), de inferencias filogenéticas y evaluación de la confiabilidad de los árboles (MEGA, MrBayes, PhyML, TNT, otros). Se realizarán análisis de coalescencia (BEAST), evaluando la inflencia de distintos parámetros: relojes moleculares estrictos y relajados, diferentes modelos demográficos. Se abordará la metodología para el estudio de datos heterocronos/homocronos. Introducción al análisis filogeográfico mediante la utliización de estadísticos de asociación de la filogenia a caracteres multiestados (BaTS).

Evaluación: con evaluación final.

 

Inmunobiología de timo y sistema inmune común de mucosas: intestinal, bronquial, nasofaríngea

Director: Prof. Dra. María Estela Roux

Coordinador: Prof. Bioq. Stella Venturiello

 

Lugar donde se realiza: Cátedra de Inmunología.

Período de desarrollo: 27 de noviembre al 5 de diciembre de 2012, de 10 a 18 hs.

Carga horaria: 45 hs.

Requisitos de admisión: bioquímico, farmacéutico, biólogo, médico, químico, veterinario, licenciado en Nutrición. Presentar Currículum Vitae y carta indicando motivos para la asistencia al curso.

Arancel: $405 (incluye certificado). Diploma (optativo) $20. 

 

Propósito. Formar recursos humanos en inmunobiología de mucosas y sus patologías. Enseñar los aspectos teóricos y prácticos del tema y discutir las metodologías de uso habitual en esta disciplina; implicancias genéticas, nutricionales y endocrinológicas en distintas alteraciones de mucosas.

Clases teóricas. De cinco horas diarias: Histofisiología de timo, órganos linfáticos, tejidos linfoides asociados a mucosas y tracto genital. Ontogenia de linfocitos T. Impacto de la gestación sobre subpoblaciones de linfocitos T tímicas. Inmunobiología del sistema común de mucosas (MALT): tejido linfoide asociado a intestinos (GALT), a bronquios (BALT), a nasofaringe (NALT) y tracto genital. Linfocitos intraepiteliales de distintos órganos. Tolerancia oral: modulación de la respuesta inmune. Interrelación entre timo y estado nutricional. Enfermedades inflamatorias relacionadas con la ingesta de alimentos. Citocinas en tolerancia oral, en procesos inflamatorios y en la regulación de la trascripción de IgA. Implicancias genéticas y endocrinológicas en distintas alteraciones de mucosas. Inmunidad de mucosas frente a infección parasitaria por Helmintos.

Trabajos prácticos. Seminarios – Talleres sobre:1) Discusión de trabajos originales recientes en el área. 2) Aislamientos de linfocitos de GALT (Placas de Peyer y de Ganglio Mesentérico). Inmunocitoquímica. Inmunohistoquímica: Inmunofluerescencia sobre cortes de tejidos e inmunohistoquímica con sistema avidina-biotina-peroxidasa. Aislamientos de placas de Peyer, ganglios mesentéricos y de linfocitos intraepiteliales de mucosa intestinal. Preparación de estas células para estudios de citometría de flujo. Prácticos: Observación de preparados con microscópio óptico y de fluorescencia. Manejo de programa de captación y procesamiento de imágenes. Observación y aislamiento de timo, médula ósea y placas de Peyer de ratón.

Evaluación: con evaluación final.

 

Técnicas de biología molecular aplicadas al estudio de estructura-función de proteínas

Directores: Prof. Dra. Cristina Nowicki. 

Colaboradores: Lic. Lucila Giordana, Lic. María Belén Antola, Lic. Máximo Sosa.

 

Lugar donde se realiza: Departamento de Química Biológica.

Período de desarrollo: 27 de noviembre al 7 de diciembre de 2012, lunes a viernes de 10 a 17 hs. Carga horaria: 70 hs.

Requisitos de admisión: bioquímico, licenciado en Ciencias Biológicas y graduados de carreras afines. Presentar CV.

Arancel: $805 (incluye certificado). Diploma (optativo) $20.

 

Propósito. Aplicación y discusión de estrategias para la optimización de las condiciones de expresión de proteínas recombinantes, confirmación de la función esperada mediante la identificación de residuos esenciales para la actividad o la capacidad de complementar in vivo la función de homólogos reconocidos.

Clases teóricas. Ventajas y desventajas de diferentes sistemas de expresión heteróloga. Vectores de expresión, promotores, inductores, etc. Diseño de proteínas recombinantes, conveniencia para la ubicación (N-oC-terminal de la proteína) de diferentes etiquetas que faciliten la expresión soluble y purificación por cromatografía de afinidad. Señales para el direccionamiento de la proteína recombinante a ámbitos intracelulares o extracelulares. Caracterización funcional mediante mutagénesis in vitro o complementación funcional in vivo. Control de calidad de la proteína recombinante.

Trabajos prácticos. Se utilizarán variadas técnicas de biología molecular para el aislamiento, manejo y modificación de los genes objeto de estudio. Se analizarán distintas condiciones de expresión en E. coli empleando distintas cepas bacterianas, chaperonas, precursores, etc. Para el reconocimiento de residuos esenciales para la actividad, cambios en la especificidad de sustrato se utilizarán distintas técnicas de mutagénesis in vitro. Se utilizarán levaduras como organismos modelo para evaluar la capacidad de complementar la función in vivo. Talleres: Discusión de trabajos de bibliografía sobre la temática del curso.

Evaluación: con evaluación final.